УДК 576.8.097.29 + 616.36.04
O коррекции тиосульфатом Na и a-токоферолом патологических
сдвигов качественного и
количественного состава фосфолипидов
головного мозга белых крыс при
CCl4-индуцированном
циррозе печени
(Представлено 29/III 2005)
Мембранные липиды, в частности фосфолипиды
(ФЛ), играют важную роль в жизнедеятельности организма. Основные регуляторные
функции мембран - это регуляция проницаемости ионов и веществ, рецепторная
функция, которая существенно зависит от состава и содержания мембранных липидов
[1-3]. Содержание индивидуальных представителей фосфолипидов (в %
от общей
Результаты комплексного изучения
различных биохимических показателей мозга, печени, крови при целом ряде
патологий [4] свидетельствуют, что развитие выраженных структурно-функциональных
сдвигов в исследованных тканях коррелирует с интенсивностью перекисного
окисления липидов (ПОЛ) и состоянием антиоксидантной
системы.
Целью настоящей статьи стало
изучение особенностей изменения ФЛ-ФЛ соотношений в головном мозге при
экспериментальном циррозе печени, a также изучение на фоне цирроза печени
особенностей действия тиосульфатa натрия (ТСН) и a-токоферолa (ТФ) в опытах in
vivo.
Исследования проводились на 30
беспородных белых крысах-самцах массой 150-200 г, разделенных на шесть
экспериментальных групп: I) контрольная группа; II) опытная группа с
экспериментальным CCl4-индуцированным циррозом; III) интактные
животные, получившие ТФ; IV) опытная группа с экспериментальным
CCl4-индуцированным циррозом, получившая ТФ; V) интактные животные,
получившие ТСН; VI) опытная группа с экспериментальным
CCl4-индуцированным циррозом, получившая
ТСН.
В течение 20 дней два раза в неделю
опытные группы II, IV и VI внутрибрюшинно получали 0.3 мл CCl4;
опытные группы III и IV - 0.4 мг ТФ; опытные группы V и VI - 1 мл ТСН и группа I
- 1 мл физиологического раствора.
Животных
декапитировали под легким наркозом, мозг быстро извлекали, охлаждали и отмывали
от крови в изотоническом растворе NaCl, на холоду освобождали от оболочек и
кровеносных сосудов. После многократной экстракции фосфолипидов
хлороформ-метаноловой смесью из заранее приготовленных ацетоновых порошков
головного мозга [5] производили их фракционирование в тонком слое силикагеля на
пластинах фирмы "Мерк" (Германия) в системе растворителей
хлороформ:метанол:аммиак (65:35:5).
Идентификацию хроматографических пятен индивидуальных ФЛ производили с
помощью стандартов ("Sigma", США) в атмосфере, насыщенной парами йода.
Количество ФЛ выражали в мг липидного фосфора, минерализованного сжиганием проб
ФЛ в смеси концентрированных серной и азотной кислот в песочной бане при
180-20oC до состояния прозрачности, с последующим расчетом количества
неорганического фосфора, определяемого по цветной реакции молибденовокислого
аммония с витамином C [6]. Белок определяли по Лоури и соавт. [7]. Полученные
результаты были обработаны методом вариационной статистики с использованием
критерия Стъюдента [8].
Относительные
содержания индивидуальных ФЛ в ткани головного мозга белых крыс в норме при
CCl4-индуцированном циррозе печени, а также при применении ТФ и ТСН
на фоне болезни представлены в таблице.
Анализ полученных результатов свидетельствует о значительных
качественных и количественных изменениях в фосфолипидном составе изученных
образцов. Количество лизофосфатидилхолинов (ЛФХ) в головном мозге больных
животных увеличилось на 47%, что может быть результатом чувствительной
интенсификации процессов деацилирования фосфатидилхолинов (ФХ),
характеризующихся также образованием высокого пула неэстерифицированных жирных
кислот, вступающих в окислительные процессы, связанные с активацией ПОЛ и
образованием малонового деальдегида (МДА).
Снижение содержания ФХ (11%) сопровождается одновременным уменьшением
количеств фосфатидилсеринов (ФС) и фосфатидилэтаноламинов (ФЭ) (14 и 12%
соответственно). Значение последних в катализе реакций окисления и поддержании
дыхательной функции митохондрий едва ли можно переоценить. Антиокислительная
смесь ФХ, полученная из сои, восстанавливает фосфолипиды поврежденных мембран и
активирует их ферменты, включая фосфатидилэтаноламин метилтрансферазу [9, 10].
Уменьшение содержания ФХ, ФС и ФЭ одновременно может быть связано с тем, что они
наиболее быстрo подвергаются окислению свободными радикалами при усилении
процессов ПОЛ.
Настораживающим при
CCl4-индуцированном циррозе печени является и наблюдающееся
увеличение таких относительно медленно обменивающихся ФЛ головного мозга,
каковыми являются сфингомиелины (СФМ) - главные липидные компоненты миелиновой
фракции. Так как СФМ - обычно очень насыщенный липид, не содержащий полиеновые
кислоты, повышенное количество этих липидов приводит к выраженной жесткости
мембран, т.е. к увеличению микровязкости липидной фазы мембран, что, в
частности, характеризуется угнетением активности Na,K-ATP-5 нуклеотидазы
[11].
Содержание кардиолипинов (КЛ) в
головном мозге невелико, однако нельзя игнорировать чувствительное повышение
содержания этого липида, который вместе с ФС и монофосфоинозитидами (МФИ)
обеспечивает необходимый уровень гидрофобности, следовательно, и
липидзависимости ряда митохондриальных ферментов, катализирующих реакции
электронтранспортирующей цепи в отмеченных субфракциях клеток и дыхательной
функции клеток в целом. Как известно, КЛ являются носителями отрицательного
заряда, следовательно, они способны выполнять ионофорную функцию, в том числе
влиять на транспорт Ca2+ и Na+.
Выявлен также факт повышенного содержания МФИ. В крови содержание МФИ
при CCl4-индуцированном циррозе было понижено [12], а в головном
мозге - наоборот, повышено (на 23%). Это связано с тем, что МФИ участвуют в так
называемом фосфатозитидном цикле [13], который отвечает за синаптическую
передачу нервных импульсов [14].
Описанные
сдвиги в известной степени отражают характер ответной реакции организма на
комплекс патогенетических сигналов, поступающих из очага поражения.
Следовательно, противоположная направленность количественных изменений
нейтральных и кислых ФЛ в исследованных биологических системах может быть
интерпретирована как адекватная для данной патологии специфическая ответная
реакция организма.
Введение животным ТФ и
ТСН сопровождается заметным нивелированием расстройств, что отражается в
количественном содержании всех исследованных категорий ФЛ головного мозга белых
крыс при CCl4-индуцированном циррозе печени: в частности ЛФХ, СФМ,
ФХ, ФЭ и КЛ проявили тенденцию к нормализации, а нормализация количественных
сдвигов МФИ и ФС достигла 100%. Констатировано, что ТСН является более
эффективным корректором метаболизма ФЛ головного мозга, нежели ТФ, хотя в случае
СФМ ТФ эффективнее.
Обобщение полученных
результатов позволяет говорить о возможной патогенетической роли нарушения
метаболизма важнейших компонентов липидного бислоя, что, безусловно, приводит к
нарушению функциональной активности мембранных структур клеток при данной
патологии, а также о высокой эффективности применения ТФ и ТСН в случае
CCl4-индуцированногo циррозa.
суммы) в головном мозге при CCl4-индуцированном циррозе
печени под
воздействием ТФ и ТСН
Институт молекулярной
биологии НАН РА
Институт биохимии им. Г. Х. Бунятянa НАН РА
1. Карагезян К. Г. Фосфолипиды
и их роль в жизнедеятельности организма. Ереван. Айастан. 1972. 267 с.
2. Климов А. Н. Биохимия
липидов и их роль в обмене веществ. М. Наука. 1981. С. 45-75.
3. Кребс Е. М. Липиды
клеточных мембран. Л. Наука. 1981. 339 с.
4. Карагезян К. Г., Мелкумян А. В., Геворкян Д. М. и др. - Мед. наука Армeнии. 1995. Т. 35. № 1-2. С. 80-86.
5. Карагезян К. Г. - Лаб. дело. 1969. Т. 1. С.3-6.
6. Зубер В. Л. - Методы
биохимических исследований. Л. 1982. С. 74-87.
7. Lowry O. H., Rosenbrough J. et al. - Biol. Chem. 1951.
V. 193. № 1. P. 265-275.
8. Закутинский Д.
И., Селиванова Л. И. B кн.: Биологическая оценка препаратов для
профилактики и лечения лучевой болезни. М. Медгиз. 1960. С. 97-102.
9. Hayashi H., Tanaka Y., Hibino H., Umeda
Y., Kawamitsu H., Fujimoto H., Amakawa T. - Curr. Med. Res. Opin.
1999. V. 15. № 3. P 177-184.
10. Lieber C.
S. - Alcohol. Clin. Exp. Res. 1999. V. 23. № 5. P 944-949.
11. Дятловицкая Э. В. - Биохимия. 1995. Т. 60. № 6. С. 843-850.
12. Маргарян А. С., Карагезян К. Г., Овсепян Л. М., Симонян А. А. -
Кровь. 2005. Т. 2. С. 36-42.
13. Левицкий Д. О. Биохимия мембран. Кальций и
биологические мембраны. М. 1990. 125 с.
14.
Pacheco M. A., Jope R. S. - Prog. Neurobiol. 1996. V. 50. № 2-3. P
255-273.